适当的对照对于免疫组化IHC/ICC结果的准确阐释至关重要。令人满意的IHC/ICC实验设计产生的结果能够证明抗原位于正确的组织、细胞类型或亚细胞定位。固定、封闭、抗体孵育和抗原修复步骤的优化将产生强烈而特异的信号。然而，IHC/ICC实验必须包含阳性和阴性对照，以支持染色的有效性，并识别实验假象。此外，抗体特异性、实验条件、组织类型的生物学条件、甚至研究人员的差异都可能产生不一致的染色，导致不准确的结论。为了获得一致的结果，详细记录是IHC/ICC研究的一个重要因素。在此，优宁维实验室表示有一些公认的对照。可用来证实您IHC/ICC结果的特异性。方法/步骤1/6分步阅读

内源性组织背景对照

某些细胞和组织可能有着固有的生物学性质，产生背景染色，从而导致结果的误读。在一抗上样之前，应利用荧光(适用于荧光标记)或明视场（适用于显色标记）照明在显微镜下检查细胞和组织，以确保组织本身没有信号。

神经系统组织中的脂褐质的自发信号。脂褐质是一种色素，随着年龄增长在多种组织类型中积累。它也有着自发荧光的性质，其激发和发射光谱与常用的荧光色素重叠。上面显微照片中圈出的就是包含脂褐质的神经元，它可以在明视场显微镜（A）或荧光显微镜的绿色（B）和红色（C）光谱中被标记出来。

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无一抗对照

将组织与抗体稀释液孵育，其中不包括一抗的对照通常也是必需的。之后与二抗和检测试剂孵育。只用检测试剂染色应该是可以忽略的，它不会掩盖特异染色，或者说其染色模式不同于特异染色.

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同型对照

在使用单克隆一抗时，可利用此对照。将样品与抗体稀释液孵育，并添加与一抗相同亚型（如lgG1、lgG2A、lgG2B、lgGM）和浓度的非免疫性免疫球蛋白。之后将样品与二抗和检测试剂孵育。这些步骤将确保所呈现的特异染色不是有免疫球蛋白分子与样品的非特异相互作用引起的。背景染色应该是可以忽略的，与特异染色不同。

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吸附对照

为了证明抗体是与目的抗原特异结合，首先要将抗体与免疫原预孵育。这会使抗体失活，组织应该无染色或很少染色。抗原与抗体的混合物应以10:1（摩尔比）配制，并在4℃预孵育过夜。随后将预吸附的抗体与组织共同孵育，以取代一抗。将一抗产生的染色模式与预吸附抗体产生相比较。

如果免疫原是肽段，那么吸附对照效果更好。不过，如果抗体是由整个蛋白产生的，则抗体与蛋白混合物的添加可能导致更高的非特异染色。尽管机理还不清楚，但是可能是预吸附所用的抗原本身与组织结合，产生非特异染色。因此，必须注意，使用整个蛋白的吸附对照不一定能验证抗体与组织中蛋白结合的特异性。

大鼠背根神经节中用吸附对照确定染色结果的特异性。A.利用anti-human phospho-MSK1亲和纯化过的多克隆抗体（货号AF1036）对大鼠背根神经节冰冻切片中的磷酸化MSK1(S212)进行染色。B.如果抗体用S212磷酸化免疫原预先吸附，则细胞核染色（箭头所指)消失。

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组织类型对照

IHC/ICC实验的其他对照包括使用已知表达（或不表达）目的表位的组织样品。这种策略可提供有用的参考，也可使用在初步优化研究中。来自转基因动物的组织特别有用，它们过表达或不表达抗原。此外，可以使用不同物种的组织样品，以证实抗体的物种特异性。

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用Western Blot进行参照的局限性

人们常常开展Western Blot实验，以补充或支持IHC/ICC研究。不过，在变性过程中蛋白构象的变化可能产生误导性的结果。对于某一特定抗体，Western Blot与IHC/ICC研究之间的不一定可能只是反映出实际条件的差异。由于多克隆抗体识别多个表位，故没那么容易产生这种实验假象。